目的 建立广藿香药材不同部位的UPLC指纹图谱,研究广藿香不同部位的质量差异。
方法 采用UPLC法建立广藿香不同部位化学指纹图谱,结合相似度评价、热图聚类分析(CA)、主成分分析(PCA)及正交偏最小二乘法-判别分析(OPLS-DA)对18批广藿香药材、茎、叶的UPLC指纹图谱进行分析,并测定广藿香酮含量。
结果 18批广藿香药材及不同部位的UPLC指纹图谱均确定了9个相同的共有峰,并通过对照品指认4、6、9号峰分别为毛蕊花糖苷、异毛蕊花糖苷和广藿香酮。CA和PCA结果表明广藿香叶和茎的质量差异大,叶和药材的质量较接近。OPLS-DA发现5种成分是造成不同批次样品质量差异的主要标志物。含量测定结果表明同一批广藿香中的广藿香酮含量均为茎>药材>叶。
结论 广藿香不同部位的化学成分相似,但含量存在显著性差异,本研究可为广藿香药材的质量控制及资源开发利用提供参考。
广藿香为唇形科植物广藿香Pogostemon cablin (Blanco) Benth.的干燥地上部分[1],主要分布于我国广东、海南、广西、云南等地,具有芳香化浊、和中止呕、发表解暑的功效[2],用于湿温初起、暑湿表证、胸闷不舒、发热倦怠、寒湿闭暑、鼻渊头痛、腹痛吐泻等症,是消化系统疾病及暑湿时令之常用中药[3]。广藿香主要包括黄酮类、萜类、苯乙醇苷类和甾体等化学成分[4],现代药理研究[5-6]表明,广藿香具有抗菌、调节胃肠功能、促进消化液分泌、保护胃肠屏障、免疫调节、抗炎、抗氧化、抗肿瘤、抗病毒等药理活性。
目前对于广藿香药材的研究主要集中于不同产地、不同采收期的有效成分分析。张洪坤等[7]通过建立广藿香药效物质基础标准汤剂的HPLC指纹图谱分析方法,结合多元数理统计方法对不同产地的广藿香进行聚类分析并建立判别模型;罗集鹏等[8-9]采用气相色谱-质谱联用技术(GC-MS)对4月和7月不同产地广藿香挥发油的成分进行分析,发现茎油和叶油中多种成分相同,仅在含量上有差异;李媚等[6]研究道地产区广藿香药材,预测广藿香治疗病毒感染和胃溃疡的潜在质量标志物;荆文光等[2]利用指纹图谱结合化学计量学对不同比例广藿香叶的样品中差异性成分进行筛选。此类研究为广藿香的质量评价奠定了基础,但大部分研究均采用气相色谱条件,忽略对广藿香中非挥发性成分的研究。UPLC采用小粒径填料色谱柱,配合超高压系统,具有柱效更高、灵敏度更高、分析通量更大等优势。本研究采用UPLC法建立广藿香不同部位(茎、叶)的指纹图谱,共确认9个共有峰,并通过对照品指认确定了毛蕊花糖苷、异毛蕊花糖苷和广藿香酮3个特征峰,同时运用相似度评价、热图和聚类分析、主成分分析等化学模式识别方法对其UPLC指纹图谱数据进行统计分析,并对导致质量差异的质量标志物进行含量测定,以期为广藿香的质量控制提供参考。
1 仪器与试药
1.1 仪器
Thermo Vanquish型高效液相色谱仪(美国Thermo Fisher Scientific公司);XP26型百万分之一天平、ME204E型万分之一天平(瑞士METTLER TOLEDO公司);Milli-Q Direct型超纯水系统(德国Merck公司);KQ-500DE型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);111B型二两装高速中药粉碎机(浙江瑞安市永历制药机械有限公司);HWS28型恒温水浴锅(上海一恒科技有限公司)。
1.2 试药
广藿香酮对照品(中国食品药品检定研究院,批号:111822-201102,纯度100.0%);毛蕊花糖苷对照品(成都格利普生物科技有限公司,批号:19092702,纯度98.5%);异毛蕊花糖苷对照品(上海诗丹德标准技术服务有限公司,批号:5120,纯度98.0%);甲醇为色谱纯(德国Merck公司);甲酸为色谱纯(天津市科密欧化学试剂有限公司);水为超纯水,其他试剂为分析纯。实验用18批广藿香药材(编号:C1~C18)经广东一方制药有限公司魏梅主任药师鉴定为正品,均为唇形科植物广藿香Pogostemon cablin (Blanco) Benth.的干燥地上部分。将18批广藿香药材的茎、叶分离,得茎(编号:J1~J18)、叶(编号:Y1~Y18)样品,药材产地见表1。
2 方法与结果
2.1 色谱条件
色谱柱:Waters BEH Shield RP C18柱(150 mm ×2.1 mm,1.7 μm);流动相:乙腈(A)-0.1%甲酸溶液(B),梯度洗脱(0~2 min,5% A;2~3 min,5%~10% A;3~4 min,10%~18% A;4~10 min,18%~26% A;10~15 min,26%~34% A;15~17 min,34% A;17~25 min,34%~48% A;25~35 min,48%~75% A;35~37 min,75%~5% A;37~40 min,5% A);流速:0.3 mL·min-1;柱温:40℃;检测波长:310 nm;进样量:2 μL[10]。
2.2 对照品溶液的制备
分别取毛蕊花糖苷、异毛蕊花糖苷、广藿香酮对照品适量,精密称定,加入50%甲醇定容,制成质量浓度分别为60.744,73.935,61.200 μg·mL-1的混合对照品贮备液;另取广藿香酮对照品适量,精密称定,加50%甲醇制成质量浓度为202.500 μg·mL-1的对照品溶液。
2.3 供试品溶液的制备
取样品粉末适量(过三号筛),取约1.0 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入50%甲醇25 mL,称定质量,加热回流30 min,取出,放冷,再称定质量,用50%甲醇补足减失的质量,摇匀,滤过,取续滤液,即得。
2.4 方法学考察
2.4.1 专属性试验
分别精密吸取空白溶剂、混合对照品溶液及供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,结果如图1所示,供试品溶液色谱在与对照品溶液色谱相应的保留时间处具有相同的色谱峰,且空白溶剂无干扰,表明该方法专属性良好。
2.4.2 精密度试验
精密吸取“2.2”项下混合对照品溶液,按“2.1”项下色谱条件连续进样6次,计算得各色谱峰峰面积的RSD均小于3%(n=6),表明仪器精密度良好。
2.4.3 重复性试验
取样品粉末(编号:C1)适量,精密称定,平行称定6份,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,计算得各共有峰相对保留时间和相对峰面积的RSD均小于3%(n=6),表明该方法重复性良好。
2.4.4 稳定性试验
取样品粉末(编号:C1)适量,精密称定,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件分别在0,2,4,6,8,12,24 h进样测定,计算得各共有峰相对保留时间和相对峰面积的RSD均小于3%(n=7),表明供试品溶液在24 h内稳定性良好。
2.5 UPLC指纹图谱的建立与相似度评价
2.5.1 指纹图谱的建立
取18批广藿香药材、茎和叶样品,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录色谱图。将采集到的UPLC色谱图导入中药色谱指纹图谱相似度评价系统(2012版)软件进行匹配,分别生成对照指纹图谱R1、R2和R3。18批广藿香药材、茎和叶UPLC指纹图谱的堆叠图如图2~图4所示。18批广藿香药材、茎和叶的UPLC指纹图谱均标记出9个相同的共有峰,通过与对照品图谱对比,确定4号峰为毛蕊花糖苷、6号峰为异毛蕊花糖苷、9号峰为广藿香酮。
2.5.2 相似度评价
将18批广藿香药材、茎和叶的UPLC指纹图谱的数据文件导入中药色谱指纹图谱相似度评价系统(2012版)软件,分别计算各批次广藿香药材、茎和叶指纹图谱与其对照图谱的相似度,结果见表2。除部分批次外,广藿香药材、茎和叶的UPLC指纹图谱与其相应对照指纹图谱(R1、R2、R3)的相似度均大于0.85,表明不同批次广藿香药材同一部位的差异较小。同部位差异较大的批次可能是由于不同产地、不同采收期导致。
2.6 化学模式识别分析
2.6.1 聚类分析
采用Heml 1.0软件[11],以18批广藿香药材、茎和叶共54个样品的指纹图谱中9个共有峰的“峰面积占比”(各共有峰峰面积占共有峰总面积的比例)作为变量进行聚类分析,结果见图5。结果表明,54个样品可聚为3类,J1~J6、J8、J11~J18、Y12、Y15、Y17~Y18、C12聚为一类;J7、J10、Y1~Y5、Y9~Y11、Y13~Y14、Y16、C9~C11、C13~C16聚为一类;J9、C1~C8、C17~C18、Y6~Y8聚为一类。除部分批次外,茎与药材基本可以分为两类,叶分散在茎和药材类别之中,无法较好地聚类,表明茎和药材质量存在较大差异。指纹图谱结合热图各成分颜色变化可以清晰看出共有峰中发生变化的成分及其变化程度。其中峰9代表广藿香酮,可见其在茎中的含量最高,在药材及叶中的含量明显低于茎。
2.6.2 主成分分析
采用SPSS 26.0软件,以18批广藿香药材、茎和叶共54个样品的指纹图谱中9个共有峰的“峰面积占比”作为变量进行主成分分析,结果见表3、表4及图6。以特征值大于1为提取标准提取主成分[12],提取出前3个主成分,对总方差的累积贡献率达86.753%,表明提取的3个主成分能基本反映全部指标的信息。主成分1的特征值为4.311,方差贡献率为47.902%,载荷较高的峰有峰2、峰3、毛蕊花糖苷、峰7、峰8和广藿香酮,表明这6个成分主要反映主成分1的信息;主成分2的特征值为2.442,方差贡献率为27.131%,载荷较高的峰有峰1、峰5和异毛蕊花糖苷,表明这3个成分主要反映主成分2的信息;主成分3的特征值为1.055,方差贡献率为11.720%,载荷较高的峰有峰5,表明峰5主要反映主成分3的信息。由主成分得分图可以看出茎与药材基本可以分为两类,叶分散在茎和药材类别之中,与聚类分析结果一致。
2.6.3 正交偏最小二乘法-判别分析
采用SIMCA 14.1软件,以18批广藿香药材、茎和叶共54个样品的指纹图谱中9个共有峰的“峰面积占比”作为变量进行正交偏最小二乘法-判别分析(OPLS-DA)[13-14],结果见图7、图8。由模型参数可知,数据矩阵的模型解释率R2X(cum)为0.95,模型预测参数Q2为0.59,均大于0.50,表明该数学模型稳定可靠。54批样品可分成3类,广藿香药材、茎和叶各聚为一类,与聚类分析和主成分分析结果一致。以变量重要性投影(VIP)值大于1为提取标准,结果表明峰2、峰7、峰3、峰1和广藿香酮是影响分类的主要标志性成分。查阅文献可知广藿香酮为广藿香的主要药效成分,具有抗炎、抗氧化、抗肿瘤等药效作用[15],因此选择广藿香酮作为广藿香的质量标志物,对18批广藿香药材、茎、叶样品进行含量测定。
2.7 广藿香酮含量测定
2.7.1 线性关系考察
精密吸取“2.2”项下广藿香酮对照品溶液,加50%甲醇稀释制成系列浓度的广藿香酮对照品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录色谱图。以对照品溶液质量浓度为横坐标(X,μg·mL-1),峰面积为纵坐标(Y)进行线性回归,绘制标准曲线,得广藿香酮线性回归方程为Y=0.3933X+0.2044(r=0.9996),表明广藿香酮质量浓度在4.050~202.500 μg·mL-1范围内线性关系良好。
2.7.2 精密度试验
精密吸取“2.2”项下广藿香酮对照品溶液,按“2.1”项下色谱条件连续进样6次,计算得广藿香酮峰面积的RSD为2.37%(n=6),表明仪器精密度良好。
2.7.3 稳定性试验
取样品粉末(编号:C1)适量,精密称定,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件,分别在0,2,4,8,12,24 h进样测定,计算得广藿香酮峰面积的RSD为1.45%(n=6),表明供试品溶液在24 h内稳定性良好。
2.7.4 重复性试验
取样品粉末(编号:C1)适量,精密称定,平行称定6份,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,计算得广藿香酮的平均含量为0.157%,其RSD为2.78%(n=6),表明该方法重复性良好。
2.7.5 加样回收率试验
取已知含量的广藿香药材粉末,精密称取9份,每份约0.5 g,置具塞锥形瓶中,分为3组,分别按低、中、高浓度精密加入广藿香酮对照品溶液适量(相当于供试品含量的50%,100%,150%),按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,计算加样回收率及RSD,结果广藿香酮的平均加样回收率为102.45%,RSD为2.25%(n=9),表明该方法准确性良好。
2.7.6 样品测定
分别取18批广藿香药材、茎和叶样品,按“2.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,计算广藿香酮的含量,结果见表5。由结果可知,18批广藿香药材及不同部位的广藿香酮含量均为茎>药材>叶,说明广藿香酮主要富集于茎;且不同批次相同部位的广藿香酮含量波动较大,说明广藿香药材的质量较不稳定。
3 讨论
化学成分是中药发挥药用功效的物质基础,研究中药不同部位化学成分种类及其含量,可初步推断不同部位的功效差异,为其开发和利用提供方向[16]。中国药典2020年版一部广藿香项下规定,广藿香的药用部位为干燥地上部分,且检查项中要求叶不得少于20%[1],表明茎、叶的占比对广藿香药材的质量有明显影响。荆文光等[2]采用GC法同时测定广藿香饮片中挥发性成分百秋李醇和广藿香酮的含量,利用指纹图谱结合化学计量学对不同比例广藿香叶的样品中差异性成分进行筛选,结果显示广藿香饮片叶比例与广藿香酮呈现负相关,表明茎部分占的比例越高,广藿香酮越高。
本研究对18批广藿香药材及茎、叶样品的UPLC指纹图谱进行分析,确定9个共有峰,并指认其中毛蕊花糖苷、异毛蕊花糖苷和广藿香酮3个特征峰;对指纹图谱相似度评价结果显示广藿香同一部位的相似度均在0.85以上,表明不同批次药材的同一部位相似度良好;通过聚类分析、主成分分析、OPLS-DA分析明确各化学成分的富集部位及影响分类的主要标志性成分,可用于评价广藿香药材的整体质量及茎、叶各部位的质量差异;含量测定结果表明同一批广藿香中的广藿香酮含量均为茎>药材>叶。本研究建立的方法稳定可靠。通过化学模式识别分析对广藿香药材及其不同部位的UPLC指纹图谱进行分析评价,可全面、综合、系统地对药材进行质量评价和差异分析,可为进一步探讨广藿香不同部位的化学成分引起的药效差异及药材资源的合理利用提供数据支撑。指纹图谱中未指认成分有待后续进行制备型液相色谱分离纯化,并采用液质联用及核磁等手段进一步分析指认。
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